*试剂盒储存在非最佳条件-建议：收到试剂盒后总是存放在室温（15℃-20℃）。

*缓冲液或者试剂暴露于减少它们有效性的条件下-建议：储存在室温（15℃-20℃），每次用完后立刻盖紧盖子，以免溶液蒸发，pH改变和污染。

*漂洗液WB中忘记加无水乙醇-建议：第一次实验时，在漂洗液WB中加入指定量无水乙醇。

*试剂和要回收溶液如PCR产物没有充分混匀-建议：加入每个试剂后都要充分混匀。

*使用了非最佳的洗脱液，洗脱液的高pH非常重要-建议：不要用水洗脱，用试剂盒带的洗脱液EB.。

*忘记做步骤9，乙醇抑制了酶切反应-建议：做步骤9，然后空气中晾几分钟，让残留乙醇挥发。

*一些硅基质膜成分一起洗脱下来，抑制了酶切反应-建议：将洗脱的回收DNA溶液13,000rpm再离心一分钟，小心取上清使用，

*一些硅基质膜成分一起洗脱下来，干扰了分光光度计读数-建议：将洗脱的回收DNA溶液13,000rpm再离心一分钟，小心取上清使用。

*在初始处理材料中没有PCR产物-建议：开始回收前，用琼脂糖凝胶/EB电泳检测PCR产物。

*起始的处理材料中DNA含量太低-建议：加大处理量和减少洗脱液的体积，但注意不要少于30μl。

*回收的片段小于100bp或者大于10kb -建议：片段小于100bp或者大于10kb回收效率都会迅速降低，可尝试提高起始处理量。

*洗脱不完全-建议：可使用2次洗脱缓冲液EB洗脱（每次30μl），合并两次洗脱液。