*不恰当的存放标本，未充分混匀，未使用合适的抗凝剂-建议：丢弃有血凝块的标本，重新用EDTA，肝素，柠檬酸剂收集血液。

*血液标本裂解前没有回复到室温-建议：处理前先把血液标本回复到室温。

*裂解时间不够-建议：可延长裂解时间至15分钟以上。

*裂解过程中没有混匀-建议：裂解过程中可以更多次颠倒混匀，或者轻弹管壁帮助裂解。

*血液标本中本身含有的白细胞数量低-建议：增加起始血液处理量。

*血液标本存放时间太长-建议：存放在4℃的血液标本超过5天的产量可能大大降低，因此不要存放太久。

*蛋白酶K失效了-建议：收到蛋白酶K后，按照每次使用量分装冻存，避免反复冻融。

*裂解不完全或者和异丙醇没有充分混匀-建议：加入结合液后，和加入蛋白酶K后立即吹打或者涡旋混匀；加入异丙醇后立即吹打或者涡旋混匀才加入吸附柱，如果太粘稠必须涡旋振荡15秒充分混匀。

*洗脱效率不高-建议：确保做了步骤8，否则残留乙醇会影响洗脱效率，仔细阅读仔细阅读注意事项6和步骤9和只使用洗脱缓冲液EB洗脱。

*忘记做步骤8，乙醇抑制了酶切反应-建议：做步骤8，然后空气中晾几分钟，让残留乙醇挥发。

*一些硅基质膜成分一起洗脱下来，抑制了酶切反应-建议：将洗脱的基因组DNA溶液13,000rpm再离心一分钟，小心取上清使用。

*血液样品太老或者不正确的存放，造成DNA降解-建议：选用新鲜的血液样品

*操作不当，造成对基因组DNA的剪切-建议：混匀时不可太剧烈，不可以用手剧烈振荡离心管，选用大口径的枪头转移或者混匀DNA。

*一些硅基质膜成分一起洗脱下来，干扰了吸光值-建议：将洗脱的基因组DNA溶液13,000rpm再离心一分钟，小心取上清使用。

*漂洗不完全-建议：1. 漂洗，直到离心下来的液体没有颜色；2. 将洗脱液当成起始材料，再重复一遍实验，注意略去蛋白酶K消化和70℃孵育步骤。